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DNA甲基化测序可在全基因组水平上最大限度的、完整的获取甲基化状态信息和与基因表达调控的多重关系,可高效精确完成全基因组甲基化测序及高分辨DNA甲基化谱式绘制,并可对发现的靶点区进行甲基化特异性PCR验证。

DNA的甲基化:是在DNA的序列不变的条件下,在其中某些碱基上加上甲基的过程

结果:一般是使甲基化位点的下游的基因表达量变少

化学反应(核心)

这个(甲基化)分析方法当中的核心化学反应,是用亚硫酸氢盐来处理DNA。DNA当中,没有甲基化或羟甲基化的C碱基,就会被转化成U碱基。

在弱酸性条件下,亚硫酸氢根会结合到没有甲基化的C碱基的6位。而甲基化了的C碱基不会和亚硫酸氢根发生这个反应的。然后,用碱来处理。结合了亚硫酸氢根的非甲基化的C,就被脱氨基,并且脱亚硫酸根。然后,就被转化成U碱基。

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用亚硫酸氢盐来处理DNA,可以让99%左右的非甲基化的C碱基变成U。

经过亚硫酸氢盐转化过的DNA,再经过PCR,PCR新合成出来的链,U碱基的位置,就会被替换成了“T”。那么在接下来的测序过程中,测到的也是T碱基。

而甲基化的C,因为没有被亚硫酸氢盐所转化,所以,在接下来的测序过程中,被测到的,还是“C”碱基。

这样,通过测序,看一个位置是“C”,还是“T”。如果它保持是“C”,就说明这个位置是被甲基化、或者羟甲基化了。如果测到的是“T”,就说明这个位置是没有被甲基化、或者羟甲基化。

建库方法

1. Truseq DNA建库方法

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Illumina Truseq DNA建库试剂盒当中,它所提供的接头,那么这个接头上的C碱基都是已经经过甲基化修饰了。

所以,用这些接头做出来的文库,在用亚硫酸氢盐做转化的过程当中,它的(接头上的)C还是保持是C ,不会被转成U。

带了这些接头的文库分子,就可以和测序芯片上的草皮DNA发生互补杂交。并且进一步发生桥式PCR反应。生成测序用的DNA的簇(Cluster)。

但是,这个方法有一个缺点,就是在用亚硫酸氢盐处理DNA文库的时侯,90%以上的DNA链会断掉。这样,已经建好的文库,其中90%分子会被破坏掉。也就是说文库的丰富度就会损失90%以上。

那么,相应的它有它的好处,它的好处就是,在这个建库过程当中用的PCR循环数较少。所以它PCR扩增效率不同,所引起的文库不均一程度也就较低。也就是我们通常所说的PCR bias较少。

2. EpiGnome方法

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为了解决文库丰富度受到损失的这个问题,EpiCentre公司开发了EpiGnome方法

这个方法的优点是,把亚硫酸氢盐处理的过程,放在了建库之前。这样建成的库的丰富程度会比较高。但是这个方法也有缺点,缺点就是要做较多的PCR循环,那么有了比较多的PCR循环之后,PCR产物的扩增均一性是不太好的。也就是说PCR bias会比较大。